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环境空气二恶英监测检测

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商品信息

二恶英检测

二恶英化合物(简称二恶英)是剧毒有机污染物。人体长期低剂量接触,会导致癌症、雌性化、胎儿畸形、糖尿病等疾病。自比利时发生二恶英食品污染事件和《POPs公约》在瑞典斯德哥尔摩签署以来,二恶英检测与污染防治在国际上受到越来越广泛的关注【1】。二恶英检测属超痕量、多组分检测,对特异性、选择性和灵敏度要求极高,被认为是当代化学分析领域的一大难点。美国较早开展二恶英检测研究,现已制定出一系列的检测标准。欧洲和日本也相继研究和制定了二恶英检测标准方法。我国目前正处于二恶英基础研究的起步阶段,尚未提出相关检测标准和方法,因此亟待建立符合我国国情的二恶英检测方法和体系。

二恶英检测标准 HJ 77 烟气检测标准

GB 5009.205-2013 食品安全国家标准

中国科学院广州化学研究所分析测试中心

邹工 18922264183


2 二恶英检测方法 
2.1化学仪器分析方法 
    在200余种异构体中分离出17种有明显毒性的二恶英 ,分别测定其浓度或含量。将浓度或含量乘以每种二恶英的毒性因子(TEF)就可以得到总毒性当量(TEQ)。该方法的一般程序包括采样、提取、净化、定性定量。 
2.2 生物学检测方法 
目前建立的生物学检测方法均是通过对Ah受体活化程度的测定来间接表达二恶英的TEQ。 
2.2.1 EROD细胞培养法 
    二恶英与Ah受体结合活化后,被Ah受体核转位因子(ARNT)转移到细胞核内,活化的核内基因是特异性DNA片段即二恶英响应因子(DRE)。启动发挥毒性的基因并增加其转录,从而激活EROD酶的活性。所以通过测定EROD酶的活性,可以了解二恶英激活Ah受体的能力,进而获得测试样品中二恶英的TEQ【6】。 
2.2.2 萤光素酶方法 
该方法是将萤火虫萤光素酶作为报告基因结合到控制转录的DRE上,制备成质粒载体并转染H4IIE大白鼠肝癌细胞系(含Ah受体传导途径的各个部件)。以此构成的CALUX系统萤光素酶诱导活性与二恶英 的毒性系数相对应,最终测定的结果也是TEQ【6】。 
2.2.3 EIA酶免疫方法 
    该方法是根据鼠单克隆抗体DD3与二恶英结合的特点而建立的竞争抑制酶免疫方法。使用酶竞争配合物(HRP)和样品中二恶英共同竞争有限的DD3抗体的特异性结合位点,以一系列不同浓度的2,3,7,8-TCDD为标准物质,作出2,3,7,8-TCDD标样与对应样品的剂量-效应曲线,样品中二恶英毒性强度以计算出的TCDD毒性等价浓度间接表示。最终通过测定DD3与HRP螯合物的荧光强度来获取二恶英的TEQ。螯合物的荧光强度与二恶英的TEQ成反比【7】。 
2.2.4 DELFIA荧光免疫法 
    DELFIA(Dissociation-enhancement Lanthanide Fluoro Immunoassay)法属于时间分辨荧光免疫分析法。该方法利用生物基因技术选择出合适的抗原键合铕离子与样品中二恶英竞争单克隆抗体,待免疫反应完全后加入荧光增强液,使铕离子从抗原中解离下来,进入增强液,形成胶束,高效地发出荧光。螯合物最终用时间分辨荧光法分析,其荧光强度与二恶英的TEQ成反比【8】。 
3 二恶英检测方法分析比较 
3.1 化学仪器检测 
    目前,HRGC/HRMS法是被认可的二恶英标准检测方法,如美国的EPA 1613方法和日本工业用的JIS K0311方法。它们具有检测灵敏度高和能同时检测多个离子等优点,但所要求的样品前处理过程非常复杂,导致检测成本上升,一般检测1个样品需要900~1800美元。检测工作只能在少数专业化程度较高的实验室中进行,而建造二恶英专业检测实验室一般需要投资数百万美元以上。所有这些不利因素都制约着对二恶英开展大规模、大范围的低成本检测与研究。 
    在实际检测过程中,使用GC/HRMS法可保证灵敏度,简化前处理步骤,缩短检测时间,降低检测成本,但仍需在专业实验室中完成;使用HRGC/LRMS法可极大降低在检测仪器方面的投入,但当每克样品中二恶英浓度低于pg/g水平时,却无法获得可靠的检测结果。因而HRGC/LRMS法仅适用于检测二恶英浓度较高的污染源样品和污染较重的土壤样品。例如,美国的EPA 8280方法可检测出土壤、底泥、飞灰和燃油等样品中含4~8个氯的二恶英化合物,不能用于检测如食品等二恶英含量较低的样品。 
3.2 生物学检测 
    目前生物学检测方法主要用于对二恶英样品的定量筛选。研究表明,EROD法具有较好的准确性和较宽的线性范围,但测得的样品TEQ略高于使用标准方法获得的结果 。萤光素酶方法在牛乳样品二恶英检测实验中,与标准方法相比在检测结果方面比较一致,说明该方法可用于食品样品的二恶英毒性检测。上述都属于细胞培养法,检测时需要配制各种浓度的细胞试液,一般化学实验室不具备这样的条件。而且培养时间长达24h,整个检测过程需要数日,不能满足快速检测的要求【1】。此外,EIA酶免疫方法与标准方法相比,测得的TEQ值也比较一致,但灵敏度比较低。 
    DELFIA法是一种最新的二恶英检测方法,由于不需要细胞内诱导活化过程,体外活化时间仅需2h,因此1个批次样品检测可在8h内完成,极大地提高了检测效率。使用铕标记抗原,采用时间分辨荧光技术,可以消除非特异性荧光的干扰,使免疫方法的灵敏度大大提高。由于灵敏度的提高,检测所需试样量少,因此降低了检测成本。一般1个样品的平均检测成本仅10~15美元。同时,该方法对实验条件要求不高,大部分检测工作均可在常规实验室甚至现场完成,无需建造专业实验室的高成本投入,适于对大批量样品实施快速定量筛选。 
4 结论与建议 
    以HRGC/HRMS法为代表的化学仪器分析方法具有检测灵敏度高、选择性好、特异性强等优点,但其样品前处理过程比较复杂,对实验条件的专业化程度要求高,检测时间长,检测成本高,因而具有一定的应用局限性,主要用于样品规模较小、精度要求较高的专门检测。与其相比,生物检测方法的前处理过程比较简化,样品检测时间短、检测成本低,对实验条件的专业化程度要求不高,但是其检测灵敏度和精确度相差无几,比较适用于大批量二恶英样品的快速定量筛选。

 

 

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